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微生物菌种的低温冷冻冷冻干燥保藏技术规 [复制链接]

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低温冷冻保藏

1、安瓿管或冻存管的准备

用圆底硼硅玻璃制品的安瓿管,或螺旋口的塑料冻存管。注意玻璃管不能有裂纹。将冻存管或安瓿管清洗干净,℃下高压灭菌15-20分钟,备用。

2、保护剂的准备

保护剂种类要根据微生物类别选择。配制保护剂时,应注意其浓度,一般采用10-20%甘油。

3、微生物保藏物的准备

微生物不同的生理状态对存活率有影响,一般使用静止期或成熟期培养物。

分装时注意应在无菌条件下操作。

菌种的准备可采用下列几种方法:

刮取培养物斜面上的孢子或菌体,与保护剂混匀后加入冻存管内;

接种液体培养基,振荡培养后取菌悬液与保护剂混合分装于冻存管内;

将培养物在平皿培养,形成菌落后,用无菌打孔器从平板上切取一些大小均匀的小块(直径约5-10毫米),真菌最好取菌落边缘的菌块,与保护剂混匀后加入冻存管内;

在小安瓿管中装1.2-2毫升的琼脂培养基,接种菌种,培养2-10天后,加入保护剂,待保藏。

4、预冻

预冻时一般冷冻速度控制在以每分钟下降1℃为好、使样品冻结到-35℃。

目前常用的有三种控温方法:

——程序控温降温法,应用电子计算机程序控制降温装置,可以稳定连续降温,能很好地控制降温速率。

——分段降温法:将菌体在不同温级的冰箱或液氮罐口分段降温冷却,或悬挂于冰的气雾中逐渐降温。一般采用二步控温,将安瓿管或塑料小管,先放-20℃至-40℃冰箱中1-2小时,然后取出放入液氮罐中快速冷冻。这样冷冻速率大约每分钟下降1-1.5℃。

——对耐低温的微生物、可以直接放入气相或液相氮中。

5、保藏

将安瓿管或塑料冻存管置于液氮罐中保藏。一般气相中温度为-℃,液相中温度为-℃。

6、保藏周期

一般10年以上。

7、复苏方法

从液氮罐中取出安瓿管或塑料冻存管,应立即放置在38℃-40℃水浴中快速复苏并适当摇动。直到内部结冰全部溶解为止,一般约需50秒-秒。开启安瓿管或塑料冻存管,将内容物移至适宜的培养基上进行培养。

冷冻干燥保藏

1、安瓿管准备

安瓿管材料以中性玻璃为宜。清洗安瓿管时,先用2%盐酸浸泡过夜,自来水冲洗干净后,用蒸馏水浸泡至pH中性,干燥后、贴上标签,标上菌号及时间,加入脱脂棉塞后,℃下高压灭菌15-20分钟,备用。

2、保护剂的选择和准备

保护剂种类要根据微生物类别选择。配制保护剂时,应注意其浓度及pH值,以及灭菌方法。如血清,可用过滤灭菌;牛奶要先脱脂,用离心方法去除上层油脂,一般在℃间歇煮沸2-3次,每次10-30分钟,备用。

3、冻干样品的准备

在最适宜的培养条件下将细胞培养至静止期或成熟期,进行纯度检查后(参见科技部自然科技资源平台联合管理办公室文件《微生物菌种纯度检测技术规程》(试行)),与保护剂混合均匀,分装。微生物培养物浓度以细胞或孢子不少于-个/ml为宜(以大肠杆菌为例,为了取得每毫升个活细胞菌液2毫升-2.5毫升,只需10毫升琼脂斜面两支)。采用较长的毛细滴管,直接滴入安瓿管底部,注意不要溅污上部管壁,每管分装量约0.1-0.2毫升,若是球形安瓿管,装量为半个球部。若是液体培养的微生物,应离心去除培养基,然后将培养物与保护剂混匀,再分装于安瓿管中。分装安瓿管时间尽量要短,最好在1-2小时内分装完毕并预冻。分装时应注意在无菌条件下操作。

4、预冻

一般预冻2小时以上,温度达到-20℃到-35℃左右。

5、冷冻干燥

采用冷冻干燥机进行冷冻干燥。

将冷冻后的样品安瓿管置于冷冻干燥机的干燥箱内,开始冷冻干燥,时间一般为8-20小时。

终止干燥时间应根据下列情况判断:

——安瓿管内冻干物呈酥块状或松散片状

——真空度接近空载时的最高值

——样品温度与管外温度接近

——选用1-2支对照管,其水份与菌悬液同量,视为干燥完结

——选用一个安瓿管,装1-2%氯化钴,如变深兰色,可视为干燥完结

冷冻干燥完毕后,取出样品安瓿管置于干燥器内,备用。

6、真空封口及真空检验

将安瓿管颈部用强火焰拉细,然后采用真空泵抽真空,在真空条件下将安瓿管颈部加热熔封。

熔封后的干燥管可采用高频电火花真空测定仪测定真空度。

7、保藏

安瓿管应低温避光保藏。

8、质量检查

冷冻干燥后抽取若干支安瓿管进行各项指标检查,如存活率、生产能力、形态变异、杂菌污染等。

液氮保藏应注意事项

防止冻伤,操作注意安全,带面罩及皮手套

塑料冻存管一定要拧紧螺帽

运送液氮时一定要用专用特制的容器,绝不可用密闭容器存放或运输液氮,切勿使用保温瓶存放液氮

注意存放液氮容器的室内通风,防止过量氮气使人窒息

防止安瓿管或塑料冻存管破裂爆炸,如液氮渗入管内,当从液氮容器取出时,液态氮体积膨胀约倍,爆炸力很大,要特别小心

注意观察液氮容器中液氮的残存量,定期补充液氮。

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